ICS 67.120.99
X 22
团 体 标 准
T/CAAA 018—2019
驼血多肽
Came blood polypeptide
2019-01-07 发布 2019-01-07 实施
中国畜牧业协会 发布
T/CAAA 018—2019
前 言
本标准按照 GB/T 1.1-2009 给出的规则起草。
本标准由中国畜牧业协会提出并制定。
本标准负责起草单位:内蒙古东汇生物科技有限公司、中国科学院兰州化学物理研究所、内蒙
古骆驼研究院。
本标准主要起草人:邸多隆、裴栋、董学舟、那木尔、斯仁达来、郭富城、吉日木图。
T/CAAA 018—2019
驼血多肽
1 范围
本标准规定了驼血多肽的技术要求和检验方法。
本标准适用于驼血多肽的生产。
2 规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本
文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB 2760 食品添加剂使用标准
GB 4789.1 食品微生物学检验 总则
GB 4789.2 食品微生物学检验 菌落总数测定
GB 4789.3 食品微生物学检验 大肠菌群计数
GB 5009.3 食品中水分的测定
GB 5009.4 食品中灰分的测定
GB 5009.5 食品中蛋白质的测定
GB/T 22492 大豆肽粉
GB 5009.11 食品中总砷及无机砷的测定
GB 5009.12 食品中铅的测定
GB 5009.123 食品中铬的测定
GB 5009.15 食品中镉的测定
GB 5009.17 食品中总汞及有机汞的测定
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
3.1
驼血多肽 came blood polypeptide
以检验检疫合格的骆驼血为原料,经酶解、离心、浓缩、干燥、包装等工序制成的多肽产品。
3.2
肽含量 the content o f Came blood
肽占试样的质量分数。
4 技术要求
4.1 原料要求
骆驼血来自非疫区,经宰前宰后检疫合格的健康骆驼,屠宰后经卫生采集无污染的新鲜骆驼血。
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4.2 感官要求
应符合表 1的要求。
表 1 感官要求
项目 要求 检验方法
色泽 淡黄色或乳白色,色泽均匀一致。
滋味和气味 具有本品特有的气味和滋味,无焦糊味和其它异味。
组织形态 粉末状,无结块现象。
杂质 无肉眼可见的外来杂质。 取适量试样置于白色瓷盘中,在自然光下
观察色泽和状态。闻其气味,用温开水漱
口,品其滋味
4.3 理化指标
应符合表 2的要求。
表 2 理化指标
项目 指标 检验方法
蛋白质(以干基计,N×5.79)/(g/100g) ≥ 80.0 GB 5009.5
肽含量(以干基计)/(g/100g) ≥ 80.0 GB/T 22492
相对分子量小于3000Da的多肽所占比例/% ≥ 80.0 附录A
水分(g/100g) ≥ 5.0 GB 5009.3
灰分(以干基计)/(g/100g) ≤ 8.0 GB 5009.4
4.4 污染物限量
污染物限量应符合表 3的要求。
表 3 污染物限量
项 目 指标 检验方法
铅(以Pd计)/(mg/kg) ≤ 1.0 GB 5009.12
镉(以Cd计)/(mg/kg) ≤ 0.1 GB 5009.15
总砷(以As计)/(mg/kg) ≤ 1.0 GB 5009.11
铬(以Cr计)/(mg/kg) ≤ 2.0 GB 5009.123
总汞(以Hg计)/(mg/kg) ≤ 0.1 GB/T 5009.17
4.5 微生物指标
应符合表 4的要求。
表 4 微生物限量
采样方案a及限量
项 目
n c m M 检验方法
菌落总数/(CFU/g) 5 2 104105GB 4789.2
大肠菌群/(CFU/g) 5 2 10 102GB 4789.3
注:a样品的采样及处理按GB 4789.1的规定执行。
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4.6 食品添加剂
食品添加剂的使用应符合 GB 2760 的要求及相关公告的规定。
5 检测方法
驼血多肽所占比例的检测方法见规范性附录 A。
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附录 A
(规范性附录)
相对分子质量小于 3000Da 的驼血多肽所占比例的检测方法
(高效体积排阻色谱法)
A.1 方法提要
采用高效体积排阻色谱法测定。即以多孔性填料为固定相,依据样品组分分子体积大小的差别
进行分离,在肽键的紫外吸收波长 220nm条件下检测,使用相对分子质量分布测定的专用数据处理
软件(即 GPC软件) ,对标准品和样品的色谱图及其数据进行处理,根据相对分子质量校正曲线方
程,计算得到驼血多肽的相对分子质量大小及分布范围。
A.2 试剂
A.2.1 乙腈:色谱纯
A.2.2 三氟乙酸:分析纯
A.2.3 水: GB/T 6682 规定的一级水
A.2.4 相对分子质量校正曲线所用标准品:
A.2.4.1 细胞色素 C(cytochrome C,MW12384 )
A.2.4.2 抑肽酶(aprotinin,MW6512 )
A.2.4.3 杆菌酶(bacitracin,MW1423 )
A.2.4.4 乙氨酸-乙氨酸-酪氨酸-精氨酸(MW451)
A.2.4.5 乙氨酸-乙氨酸-乙氨酸(MW189)
A.3 仪器和设备
A.3.1 高效液相色谱仪:配有紫外检测器和含有 GPC数据处理软件的色谱工作站
A.3.2 流动相真空抽滤脱气装置
A.3.3 超声波振荡器
A.3.4 分析天平:感量 0.0001g
A.4 色谱条件与系统适应性实验
A.4.1 色谱柱:TSKgel G2000 SWXL 300mm ×7.8mm(GEL LOT 502R) 或性能与此相近的同类型其
他适用于测定肽的分子量分布的凝胶柱
A.4.2 流动相:乙腈:水:三氟乙酸,体积比为 40:60:0.05
A.4.3 检测波长: 220nm
A.4.4 流速:0.5mL/min
A.4.5 柱温:30℃
A.4.6 进样体积:10μL
A.4.7 为使色谱系统符合检测要求,规定在上述色谱条件下,凝胶色谱柱的柱效即理论塔板数(N )
4 T/CAAA 018—2019
按三肽标准品(乙氨酸-乙氨酸-乙氨酸)峰计算不低于 5000,蛋白肽的分配系数(Kd )应在 0~
1之间
A.5 相对分子质量校正曲线制作
分别用流动相配制成浓度为 1.0 g/L左右的上述不同相对分子质量的肽标准品溶液, 用孔径为 0.2
μm~0.5μm 聚四氟乙烯或尼龙过滤膜过滤后分别进样,得到系列标准品的色谱图。以相对分子质
量的对数(lgMW )对保留时间作图或作线性回归得到相对分子质量校正曲线及其方程。
A.6 样品制备
用称量纸称取样品 125.0mg左右, 转移至 25mL容量瓶中, 用流动相定容至刻度, 超声振荡 10min,
使样品充分溶解混匀,用孔径为 0.2μm~0.5μm 聚四氟乙烯或尼龙过滤膜过滤,其滤液用于测定。
A.7 相对分子质量的计算
将A.6制备的样品溶液在 A.4色谱条件下进样分析,然后使用 GPC数据处理软件,根据相对分
子质量校正曲线方程对样品的色谱图及其数据进行计算处理,即可得到样品中驼血多肽的相对分子
质量大小及分布范围。用峰面积归一化法计算相对分子质量在 3000以下的驼血多肽相对百分比之
和。
__________________________
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